Чем колоть палец чтобы брать кровь

Обновлено: 18.09.2024

Данный материал взят из книги “Диагностические тест-системы: Радиоиммунный и иммуноферментный методы диагностики” Таранова Анатолия Григорьевича и размещен на сайте с любезного разрешения автора.

ТЕХНИКА ЛАБОРАТОРНЫХ РАБОТ

2.1. Условия взятия и хранения биологического материала

Подготовка к проведению лабораторных исследований содержит два основных момента: необходимость соблюдения стандартных условий взятия биологического материала и предотвращение деградации биологически активного вещества в образцах.

Перед получением образца крови медицинскому работнику необходимо знать следующее:
1) некоторые биологические вещества, например гормоны, после приема пищи могут иметь повышенную концентрацию; ,
2) содержание ряда веществ подвержено влиянию циркадных (суточных) колебаний;

3) множество лекарственных веществ способны влиять на определяемые вещества, повышая или понижая их уровень в крови;

4) взятие исследуемого образца у пациентов в горизонтальном, в вертикальном положении или после физической нагрузки изменяет уровень биологически активных веществ иногда более чем на 10 %.

Желательно, чтобы кровь, предназначенная для исследования, забиралась в однотипные центрифужные пробирки. Такие пробирки должен готовить (мыть, высушивать, добавлять коагулянт или ингибитор ферментов) один сотрудник. Кровь без добавок отстаивают, а с добавками центрифугируют, полученную сыворотку или плазму разливают в такое количество мелких пластмассовых или стеклянных пробирок (стекло не всегда выдерживает низкую температуру), которое равно или превышает число разных типов тестирования.

В биохимической деятельности организма большую роль играют биологические ритмы. Пульсирующий характер секреции многих веществ от нескольких минут до суток - все это должно быть учтено при взятии биологического материала. Вне связи с временным фактором и конкретным физиологическим состоянием не существует абсолютных нормативных показателей вещества. Если не преследуется специальная цель исследовать циркадный ритм биологической активности, периферическую венозную или капиллярную кровь у пациентов желательно брать утром натощак в одно и то же время, в условиях физиологического покоя, что особенно важно при исследовании веществ, секреция и метаболизм которых протекает в течение суток неодинаково.

Во время процедуры взятия крови следует избегать гемолиза, который некоторым возможен при длительном венозном застое, энергичной аспирации крови шприцем, попадании в просвет иглы воды и детергентов, действии на кровь высокой и низкой температур.

2.1.1. Получение сыворотки или плазмы крови

Цельная кровь (капиллярная и венозная) используется в основном в биохимических исследованиях (определение глюкозы, показателей КЩР, определение концентрации электролитов в эритроцитах) и гематологии (исследование LE-клеток, гематокрита, на малярию, проведение стандартного клинического анализа крови). Для радиоиммуиных и иммуноферментных методов получают сыворотку или плазму.

Вопрос о том, что лучше брать для анализа - плазму или сыворотку - не имеет однозначного ответа. Некоторые исследователи предпочитают сыворотку, так как стероиды, например, из нее экстрагируются легче и полнее, чем из плазмы. Кроме того, плазма нередко образует эмульсию с органическими растворителями во время экстракции, а после замораживания и оттаивания в ней появляются хлопья фибрина, мешающие определению. Для биохимических исследований чаще используется сыворотка венозной крови, полученной у пациента при определенных условиях.

При выборе вида материала следует учитывать следующее:

1) При получении сыворотки крови возникает опасность того, что при отстаивании крови из эритроцитов интенсивно освобождаются протеолитические ферменты, которые могут разрушить определяемое вещество и повредить его меченый аналог во время инкубирования. Поэтому для определения содержания белковых соединений предпочтительно готовить плазму крови.

2) При получении плазмы часто используют гепарин или цитрат. Первый блокирует связывание антитела с антигеном, второй существенно изменяет кислотность среды, к которой чрезвычайно чувствительны некоторые вещества. Поэтому в сухую центрифужную пробирку желательно насыпать 50 мг ЭДТА на 5 мл крови (1:100). Сразу же после забора кровь перемешать с ЭДТА и отцентрифугировать. ЭДТА является слабым антикоагулянтом, блокатором протеолитических ферментов и составной частью многих буферных смесей.

2.1.2. Обработка крови для лабораторных исследований

Полученная и доставленная в лабораторию кровь должна быть быстро обработана, или подвергнута исследованию. Длительное стояние сыворотки над эритроцитами может привести к сдвигам концентраций составляющих, поэтому время стояния сыворотки над сгустком должно быть ограничено. Кроме того, биологический полураспад некоторых исследуемых веществ настолько мал, что стояние сыворотки при высокой комнатной температуре может полностью исказить полученные результаты исследования.

В начале обработки чистой сухой стеклянной палочкой сгусток крови осторожно отделяется от стенок пробирки, пробирка взвешивается и подготавливается к центрифугированию.
Подавляющее количество лабораторных образцов для исследований рекомендуется центрифугировать при +4 °С, со скоростью вращения 500 - 1000 g (1500 - 3000 об/мин) не более 15 - 20 минут. Высокая скорость вращения, как правило, приводит к гемолизу сыворотки или плазмы.

Полученную сыворотку (плазму) необходимо быстро отделить от форменных элементов крови и плотно закрыть пробирки крышкой. Если получена липемическая или гемолизированная сыворотка, образец, как правило, выбрасывается.

2.1.3. Хранение крови (плазмы, сыворотки)

Для определения большинства биологического материала считается возможным хранение его при комнатной температуре не более 6-8 часов.

Некоторые образцы разрешается хранить в течение недели при + 4°С. При необходимости хранения сыворотки (плазмы) более суток, образец рекомендуется замораживать при -20°С, что позволяет проводить исследования, например, спустя несколько месяцев - раковые маркеры, мочевину, холестерин, большинство гормонов и т.д.

При работе с кровью общим правилом должно являться немедленное отделение плазмы или сыворотки от форменных элементов, так как некоторые вещества могут поглощаться и инактивироваться эритроцитами и лейкоцитами. Но даже в простых водных растворах они спонтанно окисляются (например, кортизол превращается в 21-дезоксикортизол).

Большинство веществ биологического происхождения при низкой температуре более стабильны, чем при комнатной, поэтому их обычно хранят в замороженном состоянии. В пробах крови после ее взятия происходит огромное количество процессов. Быстро размножающиеся бактерии и ферментативный гидролиз могут кардинально изменять состояние и содержание всех компонентов. Наиболее эффективным средством замедления и предотвращения таких изменений являются замораживание и быстрое центрифугирование. Однако, даже при –20 °С биологическая система не стабильна, поскольку активность многих ферментов при этом не изменяется. Естественным следствием этого является снижение концентрации веществ при длительном хранении при - 40, -70°С. На примере АКТГ видно, что температурный режим и физико-химические параметры среды имеют решающее значение для сохранности вещества. При хранении АКТГ в течение 18 месяцев при –17 °С его активность, измеряемая биологическим методом, не изменяется. При 37 °С через 45 минут гормон инактивируется на 64 %, через один день при комнатной температуре - на 85%, при 3°С - на 58%. Но кортикотропная активность кислого экстракта аденогипофиза, полученного гомогенизацией ткани в 0,1 % соляной кислоте, сохраняется при 2°С не менее 39 дней.

Плазму или сыворотку непосредственно после получения запаивают в стеклянные ампулы или помещают во флакончики с плотно закрывающимися крышками, замораживают и хранят при температуре не выше -20°С. При таких условиях образцы пригодны для анализа в течение нескольких месяцев, иногда до года. При повторном замораживании и оттаивании происходит частичная деградация белковых веществ (соединений), в то время как для веществ с малым молекулярным весом (например, стероидные гормоны) эти процедуры не столь опасны.

Образцы крови необходимо хранить в хорошо закрытых пробирках, так как потеря в образце влаги в замороженном состоянии может привести к концентрированию исследуемого вещества и получению в итоге ошибочного результата.

По экономическим соображениям важно до госпитализации и до любых терапевтических вмешательств взять образцы плазмы или сыворотки и поместить их в банк сывороток. После установления диагноза, если нет нужды в исследовании биологического материала, и образец не нужен для исследований, он может быть изъят из банка сывороток или плазм, однако, в наличия патологического процесса (особенно опухоли) возможно повторное определение уровня исследуемых веществ или их комбинаций. Кроме того, исследуемый образец рекомендуется оставлять в банке сывороток с тем, чтобы при модификации наборов фирмой-поставщиком, можно было корректно продолжить мониторинг больного. Этот подход также может оказаться полезным, если появится новый маркер, отличающийся более высокой чувствительностью и специфичностью.

При медленном замораживании образуются кристаллы льда, которые разрывают молекулы, особенно белковые, поэтому для оптимальной стабильности вещества необходимо быстрое замораживание. Лучше всего замораживание проводить с самого начала в жидком азоте - в этой среде процесс замораживания идет намного быстрее и не сопровождается разрушением охлаждаемых веществ. Нет общих правил относительно размораживания, однако эксперименты показывают, что следует избегать теплового шока образцов. Размораживание следует производить медленно и постепенно. Некорректно переносить образец сразу же из –20 °С в комнатную температуру, особенно учитывая сезонные различия температур помещения. Важно избегать повторного замораживания образца, лучше предварительно разделить его на несколько пробирок, чтобы не было проблем в случае повтора анализа.

Размораживание и повторное замораживание повреждает практически все биологические пробы. Существует ошибочное мнение о том, что такое воздействие не влияет на тиреоидные и стероидные гормоны. Действительно, структура молекул этих гормонов лучше сохраняется в таких ситуациях. Однако следует помнить, что основной пул стероидных и тиреоидных гормонов циркулирует под “защитой” транспортных белков, которые, как и все другие белки, не выдерживают температурных перепадов и, разрушаясь, перестают “защищать” гормоны. Последние, освобождаясь, немедленно включаются в метаболическую цепь, что, в конечном итоге, ведет к искажению истинной картины.

Химическое окружение, в котором находится препарат, также является важным фактором. При хранении белков в растворах концентрация этих белков всегда должна быть больше 1 мг/мл. Известно, например, что разбавленная антисыворотка теряет активность намного быстрее, чем неразбавленная. Молекулы некоторых веществ биологического происхождения особенно легко разрушаются при окислении, поэтому их надо хранить в присутствии какого-нибудь восстановителя или в атмосфере, не содержащей кислорода.

Учитывая высокую скорость разрушения биологически активных веществ в органах и тканях, извлечение их и приготовление навесок анализа необходимо проводить в условиях постоянного охлаждения, хранить образцы только в замороженном состоянии. Предварительная обработка материала позволяет значительно увеличить его срок хранения. Например, после обработки гипофиза ацетоном первоначальный уровень гонадотропной активности сохраняется в нем при хранении в холодильнике без замораживания не менее года. Экстракты гормонов и чистые препараты сохраняются гораздо дольше, чем нативные образцы.

Известно, например, что в тканях гипоталамуса рилизинг-фактор к лютеинизирующему гормону подвергается сравнительно быстрому метаболическому разрушению. В то же время при хранении в стерильных условиях растворов синтетического ЛГ-рилизинг-гормонов в течение 18 месяцев при 40 °С он полностью сохранял свою биологическую активность и иммунореактивные свойства.

2.1.4. Получение, обработка и хранение мочи

Сбор мочи для определения биологически активных веществ проводят в течении заданных интервалов времени, чаще всего за сутки. На протяжении суток скорость образования и экскреции вещества с мочой колеблется весьма значительно, но эти колебания нивелируются при исследовании суточной порции мочи. В последнее время появляется возможность определять не в суммарной суточной моче и не суммарные вещества, а конкретные вещества и в любое время суток. Например, определение андрогена надпочечникового происхождения дегидроэпиандростерона-сульфата, или 17-окси-прегненолона, предназначенного для выявления адреногенитального синдрома.

Из рациона человека, по меньшей мере, за трое суток до сбора мочи
необходимо исключить продукты и лекарственные препараты, влияющие на
секрецию и метаболизм ряда веществ. Присутствие в моче некоторых
веществ эндогенного и экзогенного происхождения может искажать
результаты определения веществ. Сбор мочи производят в сосуды из дифферентного материала (стекла, пластмассы) во избежание разрушения вещества.

При сборе мочи также соблюдают определенные предосторожности, ли моча не содержит стабилизаторов, как, например, при определении стероидов и их метаболитов, она должна храниться до анализа в замороженном виде (как правило, не более 10 дней). Замороженную мочу со стабилизатором, предназначенную для определения катехоламинов, допускается хранить не более трех дней.

2.1.5. Получение экссудатов и транссудатов

Перед сбором экссудатов и транссудатов в посуду для сбора рекомендуется добавить 2 капли гепарина или на кончике ножа сухого цитрата натрия для предотвращения свертывания. Жидкость собирается в чистую сухую посуду и немедленно доставляется в лабораторию.

2.1.6. Сбор и хранение кала

Для исключения возможных погрешностей в диагностике запрещено доставлять кал после использования клизм, введения свечей, приема внутрь касторового и вазелинового масел и красящих веществ. Кал, взятый для исследования на дисбактериоз, должен быть срочно доставлен в лабораторию, или поставлен в холодильник при 4°С. При исследовании на простейшие запрещено сохранять кал в термостате или теплой воде, поскольку при этом происходит гибель и регенеративные изменения простейших.

2.1.7. Сбор и хранение мокроты

Мокроту рекомендуется собирать при кашле в сухую чистую посуду не более суток, так как при длительном хранении происходит разложение флоры и аутолиз элементов мокроты. Кратковременное хранение ее рекомендуется проводить в холодильнике при 4°С. Для бактериологических исследований мокрота не должна стоять более 4 часов с момента получения.

2.1.8. Сбор и хранение ликвора

Спинномозговая жидкость (ликвор), полученная при люмбальной пункции или пункции желудочков мозга, собирается в сухую чистую посуду и доставляется в лабораторию немедленно, так как при хранении в связи с разрушением клеточных элементов результат исследования может быть недостоверным.

2.2. Обработка лабораторной посуды

В специальных пособиях приводится много советов по тех лабораторных работ, поэтому мы ограничимся лишь некоторыми рекомендациями, имеющими существенное значение для постановки реакции и получения высококачественного результата в радиоиммунных и иммуноферментных методах диагностики. При работе с буферными системами, органическими растворителями и другими веществами, применяемыми для постановки реакции, особое внимание нужно обращать на чистоту реактивов. Вода для буферного раствора должна быть бидистиллированной и деионизированной. Органические растворители, как правило, подлежат очистке (например, эфир пропускается через колонку с оксидом алюминия) и двойной перегонке с дефлегматором (напр., при получении абсолютного этанола).

Лабораторная посуда должна быть тщательно обрабатывается механическими и химическими способами.

Приготовление моющего раствора:

на 1 л дистиллированной воды 20 г порошка типа "Лотос".

Приготовление хромовой смеси:

в фарфоровом стакане растворяют 50 г бихромата калия (K 2 Cr 2 O 7 ) в 100 мл воды. Раствор сливают в сосуд большего размера и добавляют (очень осторожно) 1 л серной кислоты (концентрированной).

Внимание! Добавлять серную кислоту в раствор, но не наоборот!

2.2.1. Обработка посуды с низкой радиоактивностью

Флаконы - снять надписи с крышек ватой, смоченной в спирте, снять крышки в коробку с надписью “грязные крышки”, слить из флаконов сцинтилляционную жидкость в сосуд для жидких радиоактивных отходов, под струей горячей воды прополоскать флаконы от толуола (до исчезновения запаха), загрузить в бак с моющим раствором, оставить на ночь. На следующий день промыть флаконы сначала под струей холодной воды (налить-вылить 10-15 раз), затем также под струей горячей воды и окончательно под струей дистиллированной воды. Сушить в сушильном шкафу при температуре 150-200 °С вниз горлышком.

Пробирки - снять надписи ватой, смоченной спиртом, промыть под струей горячей воды (налить-вылить 10-15 раз), высушить в термостате или сушильном шкафу при температуре до 150 °С, дать остыть и загрузить в (хромовую смесь на 2-3 часа, (БУДЬТЕ ПРЕДЕЛЬНО ОСТОРОЖНЫ!) , вынуть их из хромовой смеси и промыть как флаконы (см. выше).

Крышки - тщательно протираются ватой, смоченной спиртом (два тампона на крышку), высушиваются при комнатной температуре и хранятся в коробке с надписью “чистые крышки”.

2.2.2. Обработка посуды с высокой радиоактивностью

Флаконы - обрабатывать 96° спиртом: заполнить флакон спиртом, перелить спирт во второй флакон, затем в третий, . в десятый, слить в сосуд для жидких радиоактивных отходов. Процедуру повторить. Последующая обработка флаконов аналогична обработке флаконов с низкой активностью. Крышки загрузить в сосуд, залить ацетоном или 96° спиртом с полным погружением крышек, перемешать 3-5 мин, стеклянной палочкой, жидкость слить в емкость для радиоактивных отходов. Процедуру повторить. Разложить на фильтровальной бумаге в один слой и сушить в вытяжном шкафу. Хранить в коробке с надписью “чистые пробирки”.

Все вышеописанные работы проводить только в вытяжном шкафу при полном отсутствии открытого огня.

Для выполнения биохимических исследований в лаборатории посуда проходит определенный цикл обработки в соответствии с требованиями санитарно-гигиенических и противоэпидемических служб. При выполнении в лабораториях коагулологических исследований или проведения исследований определения ряда пептидных гормонов биологическими методами помимо обычной чистой стеклянной посуды используют силиконированную посуду для взятия и хранения крови и плазмы.

2.2.3. Силиконирование посуды

Силиконирование посуды осуществляют для предотвращения контаминации исследуемого образца со стеклом, в котором проводят химическую реакцию. Силиконирование тормозит активацию свертывания крови, предохраняя распад некоторых веществ (например, пептидных гормонов) при инкубации их со встряхиванием.

Стекло покрывается мономолекулярной пленкой силикона:

5% раствор дихлордиметилсилана в толуоле. Чистая сухая посуда заполняется раствором и сразу же выливается. Силиконирование проводят в вытяжном шкафу, затем проводят сушку посуды в сушильном шкафу 180°С в течение часа.

Раствор для силиконирования хранят в посуде с притертой пробкой
в вытяжном шкафу.

Использовать силиконированную посуду не более 5 раз, затем силиконирование необходимо повторить.

Изменение уровня сахара в крови может быть симптомом заболеваний, которые могут приводить к судорогам, шоку, коме. Уровень сахара в крови может быть как высоким, так и низким. Давайте обсудим и ту и другую патологию.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ САХАРА КРОВИ С ПОМОЩЬЮ ГЛЮКОМЕТРА

Сахарный диабет (diabetes mellitus) это хроническое эндокринно-обменное заболевание, обусловленное абсолютной или относительной недостаточностью гормона инсулина. Болезнь, развивается вследствие сочетанного воздействия разнообразных факторов, и характеризуется нарушением обмена веществ с наиболее постоянным его проявлением — гипергликемией (повышением сахара), развитием поражения сосудов, нервов, различных органов и тканей. Демонстративное и обязательное проявление заболевания — нарушение углеводного обмена с прогрессирующим нарастанием уровня глюкозы в крови и выделением её с мочой. Значительные потери сахара с мочой являются причиной стойкого осмотического диуреза (мочеизнурения) и развивающегося обезвоживания и потери калия.

Какие животные подвержены заболеванию сахарным диабетом и как проявляется это заболевание?

Сахарный диабет у собак возникает в 95% случаев у нестерилизованных сук, в возрасте 7-8 лет, и старше. У собак сахарный диабет проявляется не ранее 5 лет, у кошек - в 9 -11 лет при условии кормления натуральными продуктами. У кастрированных кошек и котов диабет может проявиться позже, у некастрированных - раньше, в 5 - 6 лет. У некоторых кошек, почему-то именно кошек, сахарный диабет может проявиться гораздо ранее указанного срока. Как правило, эти кошки имели более мелкие размеры, чем в среднем имеют животные этой видовой группы. Точная причина заболевания на сегодняшний день не установлена, в качестве предрасполагающих факторов рассматривают и наследственную предрасположенность, и гормональные нарушения, и перенесенные тяжелые инфекционные и системные заболевания. Основными клиническими признаками, позволяющими заподозрить сахарный диабет у собак, являются: повышенная жажда и частое обильное мочеиспускание (полиурия и полидипсия), вялость, худоба.

Сахарный диабет I типа (инсулинзависимый) возникает в молодом возрасте и сопровождается выраженным снижением или полным отсутствием секреции собственного инсулина. Единственный способ лечения сахарного диабета I типа - пожизненные инъекции инсулина, без этого лечения больные умирают от кетоацидоза.

Сахарный диабет II типа (инсулиннезависимый) возникает в среднем возрасте. При нем секреция собственного инсулина сохранена, но недостаточна и носит неправильный характер. Введение экзогенного инсулина при диабете II типа необязательно; чаще используют пероральные сахароснижающие препараты. Кетоацидоз развивается редко. Распространенность сахарного диабета у собак и кошек составляет примерно 1:400-1:500. Предрасположены к диабету кеесхонды, пули, карликовые пинчеры, кэрн-терьеры и в меньшей степени пудели, таксы, цвергшнауцеры и бигли. Чаще болеют суки и коты. К диабету предрасполагает ожирение.

Как поставить диагноз на сахарный диабет?

Диагноз ставят после измерения уровня глюкозы в крови. При уровне глюкозы в венозной крови выше 11 ммоль/л, ставят диагноз – сахарный диабет.

Кровь на биохимическое исследование у животных берут из вены. При определении сахара при помощи тест-полосок кровь берут методом пункции кровеносных сосудов кончиков ушей, возможно взятие крови из мякиша пальцев.

В лабораторных условиях можно брать кровь у животного каждые 2 - 3 часа или даже чаще. Если диагноз подтвержден, то необходимо выводить, так называемую инсулиновую кривую 9 в данном случае кровь берется в течение дня до 10-15 раз с интервалом минимум час. Это необходимо для назначения адекватного лечения. Но надо учитывать, что животные преимущественно лечатся в амбулаторных условиях, значит, определение сахара в крови должны проводить их владельцы, которые категорически не хотят этим заниматься, в большинстве случае. Поэтому, чаще всего, проводятся первичные исследования, которые подтверждают диагноз - сахарный диабет или то, что у животного повышенное содержание сахара в крови. Пока животное медленно поправляется во время болезни, владельцы еще могут съездить в лабораторию с животным или вызвать на дом лабораторных врачей, с тем, чтобы определить сахар в крови. Но как только состояние животного значительно улучшается, очень проблематично убедить владельцев съездить в лабораторию и снова сдать кровь на сахар.

Потребность в инсулине зависит от диеты, общего состояния и получаемого лечения. По правилам подбор дозы инсулина осуществляется на основании графиков изменения уровня глюкозы в крови, которые составляют, измеряя сахар каждые 1 - 2 часа. Снижение уровня сахара в крови должно быть доведено до уровня 5, 5 -10 ммоль/л. Первичная дозу вычисляется из расчета 0, 5 - 1 ед. на 1 кг веса тела, постепенно дозу подбирают до получения видимого улучшения состояния животного.

Можно использовать для лечения больных животных препараты монокомпонентного свиного инсулина-цинк-суспензии средней продолжительности действия. Он даже при длительном применении не вызывает появления в крови противоинсулиновых антител. Существует специальный собачий и кошачий инсулин – КАНИНСУЛИН, он хорошо зарекомендовал себя в лечении сахарного диабета.

Какие осложнения сахарного диабета бывают у животных?

Конечно, у животных, страдающих сахарным диабетом, могут прявляться различные осложнения. У кошек, а особенно собак, часто наблюдается катаракта, сопровождающаяся прогрессирующим помутнением хрусталика. Гораздо реже, чем у людей, у собак встречается диабетическая ретинопатия. У кошек нередки трофические поражения кожи, которые локализуются на лапах, кончиках ушей, морде, и гораздо реже на теле. У собак тоже встречаются трофические поражения кожи, особенно в запущенных случаях диабета, и они также локализуются в области конечностей, на морде, и хвосте.

В чем причины неудачного лечения сахарного диабета?

К сожалению, огромное количество животных гибнет из-за неправильного и неадекватного лечения этого заболевания. На наш взгляд, причинами этого являются:

1. Недостаточная информированность ветеринарных врачей о современных методах и основных принципах контроля и лечения диабета.

2. Отсутствие у лечащего врача реального практического опыта применения различных видов инсулинов, работы с глюкометрами, инсулиновыми шприцами и шприц-ручками.

3. Отсутствие у лечащего врача практического опыта коррекции опасной для жизни гипер- и гипогликемии, а также ведения диабетических пациентов при проведении сложных операций, в том числе офтальмологических и полостных, лечения онкологических и инфекционных заболеваний на фоне диабета.

4. Нежелание владельцев соблюдать в отношении больного животного основных принципов лечения диабета, аналогичных, принятых в гуманной медицине (регулярное и ежедневное самостоятельное измерение уровня глюкозы в крови и введение точных доз инсулина).

На сегодняшний день, в отношении лечения диабета у собак существует огромное количество МИФОВ, которые не просто мешают эффективному и безопасному лечению диабета, но и во многих случаях просто губят животных.

МИФ 1. Лечить диабет бесполезно, это мучение для животного и животное все равно умрет. Лечение диабета у собак прекрасно отработано, безопасно, и даже более эффективно, чем у человека. Единственное, что требуется от владельца – научиться два раза сутки измерять глюкозу и вводить инсулин. Данные процедуры элементарны в выполнении и безболезненны. Продолжительность жизни собак с диабетом даже может превышать продолжительность жизни здоровых собак, во многом, благодаря ежедневному контролю обмена веществ, правильному питанию и уходу.

МИФ 2. Инсулин – это опасный и токсичный препарат, он одно лечит, а другое калечит. Инсулин плохо переносится и малоэффективен. Современные генно-инженерные инсулины абсолютно безопасны, высокоэффективны, прекрасно переносятся и влияют только на уровень глюкозы. Инсулин можно вводить даже молодым, очень старым, и даже беременным или кормящим собакам.

МИФ 3. Собаке трудно брать кровь для измерения уровня глюкозы и человеческие глюкометры и иглы (ланцеты) для этого не подходят. Технология взятия крови у собак прекрасно отработана, абсолютно безболезненна и элементарна в выполнении. Современные медицинские глюкометры и ланцеты – подходят для ежедневного контроля уровня глюкозы.

МИФ 4. Кровь для контроля уровня глюкозы можно брать периодически – 1-2 раза в месяц, а инсулин вводить – приблизительно, по состоянию собаки (чуть больше – чуть меньше). Это абсолютно безграмотно и крайне опасно! Только на основании ежедневного двукратного измерения уровня глюкозы точно контролируется уровень инсулина для каждого введения. Приблизительный подбор дозы инсулина приводит или к не до коррекции уровня глюкозы (постоянной гипергликемии), что сводит к нулю смысл лечения диабета, или к развитию гипогликемии, комы и смерти.

1. Диабетическую катаракту необходимо оперировать не позднее, чем через 1-2 месяца после снижения зрительных функций. Иначе, разрушение помутневшего хрусталика приведет к развитию воспалительного процесса и гибели сетчатки и самого глазного яблока.

2. Коррекцию диабета и подбор дозы инсулина должен проводить тот врач (та клиника) где будут проводить операцию по лечению катаракты. Только они могут учесть и спрогнозировать колебания уровня глюкозы в послеоперационном периоде и откорректировать дозу инсулина.

1. Ежедневный рацион больного животного должен содержать необходимое количество калорий, чтобы ослабленный животное могло восстановить нормальный вес. Обязательно употребление мяса, рыбы, геркулеса. Нарушение обменных процессов в организме при диабете мешает усвоению пищи, поэтому время кормления лучше подбирать в соответствии с периодом максимального эффекта от введенного инсулина.

2. Прием пищи должен вызывать у пациента всегда одинаковый гипергликемический ответ. Для этого рекомендуется проводить кормления в одно и то же время одинаковыми порциями. Стоит понимать, что физиологические особенности каждого животного индивидуальны, и хозяин должен производить корректировку рациона и дозировки инсулина в зависимости от состояния питомца.

3. Существуют специализированные лечебные корма. Они сбалансированы, содержат необходимое количество клетчатки, способствующей снижению уровня сахара в крови. Также готовые корма оптимальны по содержанию углеводов, поэтому после приема пищи резких скачков концентрации глюкозы не происходит. Если значения сахара в крови не критичны, то положительной динамики можно добиться диетотерапией, без применения лекарств.

Гипогликемия – это снижение уровня сахара крови. Сама по себе гипогликемия не болезнь, она только лишь служит выражением нарушений в органах и системах, отвечающих за метаболизм и регуляторные процессы в организме.

- недостаток поступления углеводов в организм с пищей;

- недостаточная кишечная абсорбция;

- образование глюкозы в печени;

- нарушение функции печеночных ферментов;

- дисфункция (гипофункция) надпочечников;

- дисфункция поджелудочной железы (панкреатическая опухоль с чрезмерной продукцией инсулина - инсулинома);

- дисфункция щитовидная железа;

- тяжелые формы паразитарных инвазий.

Острая гипогликемия является опасным для жизни состоянием. Глюкоза - это основной субстрат для производства энергии в центральной нервной системе. При ее недостатке возникают эпизоды слабости, постоянной сонливости, чрезвычайно быстрой утомляемости, отклонений в поведении неясного характера, отсутствие аппетита. При дальнейшем падении уровня сахара возникает мышечный тремор, атаксия (нарушение координации), судороги. Конечная стадия процесса - гипогликемическая кома.

Какие животные более чувствительны к гипогликемии? Особенно чувствительны к недостатку глюкозы щенки и котята в возрасте до двух недель, а так же карликовые породы собак.

Диагностируется гипогликемия на основании клинических симптомов и результатов исследования проб крови. Для этого используется специальный прибор – глюкометр, который позволяет врачу точно и быстро установить концентрацию глюкозы в крови пациента. Нормальный уровень глюкозы для животного находиться в диапазоне не ниже 3.4 ммоль/л. Снижение уровня глюкозы в крови до 1,3 ммоль/л сопровождается судорогами, при дальнейшем снижении развивается гипогликемическая кома и животное может погибнуть.

Гипогликемия сопровождается упадком сил, тремором, нервозностью, полифагией, тахикардией, атаксией, фасцикуляцией мышц (нарушение координации сокращений мышц, дискоординация, нарушения зрения, генерализированные припадки, нервные расстройства). Если у Вашего питомца наблюдаются вышеперечисленные симптомы необходимо срочно показать его доктору. При постановке диагноза во всех случаях надо учитывать следующие факторы: возраст первого проявления, вид гипогликемического состояния, причины, вызвавшие заболевание (стресс, голод или физические нагрузки).

Лечение заключается в восполнении дефицита глюкозы, так же важным аспектом является выяснение причин, вызвавших падение сахара. Обязательно проводиться полное обследование пациента, которое включает ультразвуковое исследование органов брюшной полости, забор биохимического и клинического анализов крови, исключение вирусных инфекции и др. Только после правильной и своевременной диагностики можно судить о причинах, вызвавших падение сахара у животного и назначить правильное лечение.

ВНИМАНИЕ. Не затягивайте с визитом к врачу, ситуация неотложная, животное может погибнуть без предоставления соответствующего лечения!

Еще лет 30 назад жизнь человека с сахарным диабетом была полна ограничений и запретов, а сегодня она практически ничем не отличается от жизни других людей. Грамотно подобранная схема лечения и самоконтроль — это то, что дает человеку с диабетом возможность жить полноценной и активной жизнью каждый день: учиться, работать, путешествовать, строить семью и иметь детей.

Укол, еще укол.

Получение капли крови является неотъемлемой частью ежедневного контроля сахарного диабета. Как правило, кровь берут из пальца руки, мочки уха. Иногда для этой цели также используют предплечье, бедро или голень. Но, как показывают исследования, именно боль при прокалывании и болевые ощущения мешают многим людям с диабетом добиваться стабильной компенсации заболевания. В одном из исследований около 35% респондентов отметили, что боль от прокалывания является главной причиной несоблюдения ими регулярного мониторинга уровня глюкозы крови.

Конечно, болевая чувствительность, толщина кожи и кровообращение в конечностях у всех отличаются.

В настоящее время существует много различных устройств для получения капли крови, которые позволяют учитывать все эти индивидуальные характеристики и делают данную процедуру максимально безболезненной и комфортной.

Например, люди с диабетом используют устройства, позволяющие регулировать глубину прокола кожи. Почему это так важно? Прежде всего, чтобы сделать процедуру получения капли крови менее травматичной. Ведь чем глубже прокол, тем больше вероятность повреждения нервных окончаний, а, следовательно, и большая болезненность. Кроме того, определяющими являются такие характеристики устройств, как направление движения ланцета (важно, чтобы оно было точечным и прямонаправленным) и его форма. Одним из таких устройств, созданных с применением новейших технологий, является Акку-Чек Софткликс, разработанное компанией Рош.

Надежно и практически без боли

Практически безболезненный прокол с помощью устройства Акку-Чек Софткликс был достигнут с помощью специальной запатентованной технологии Clixmotion, которая позволяет контролировать движения ланцета в двух направлениях, устраняя боковые колебания, вызывающие дискомфорт и излишнее повреждение тканей.

Проведенные клинические исследования показали, что большинство пациентов характеризует прокол кожи с помощью устройства Акку-Чек Софткликс как менее болезненный по сравнению с другими устройствами.

Получение капли крови с помощью устройств для прокалывания Акку-Чек Софткликс сводит дискомфорт к минимуму. 11 позиций регулировки глубины прокола позволяют подобрать индивидуальную настройку для каждого типа кожи. Глубина прокола колеблется от 0,8 до 2,3 мм, что делает это устройство незаменимым и надежным помощником не только для взрослых, но и для детей. Еще одно его несомненное преимущество — простота использования. Все функции — взвод, прокол и извлечение ланцета — осуществляются с помощью двух кнопок.

Специальный защитный механизм исключает риск случайного прокола и обеспечивает легкую смену ланцета. Стерильные ланцеты Акку-Чек Софткликс имеют специальную лазерную заточку и силиконовое покрытие, что позволяет избежать трения о ткани, максимально снижая тем самым болевые ощущения при проколе кожи.

5 простых правил для практически безболезненного получения капли крови:

Перед применением устройства для прокалывания вымойте руки теплой водой с мылом и тщательно их высушите.
Прокалывайте боковую поверхность подушечки пальца — это место наименее чувствительно к боли.
Прижимайте устройство для прокалывания плотно к коже в момент нажатия кнопки спуска.
Подбирайте минимальную глубину прокола, достаточную для получения необходимой капли крови.
Чередуйте пальцы для получения капли крови при каждом прокалывании.

Десятки тысяч людей с сахарным диабетом во всем мире уже оценили преимущества устройства Акку-Чек Софткликс и используют его в повседневной жизни.

Анализ крови – самое распространенное лабораторное исследование, которое назначают при профилактических осмотрах и практически при любом обращении к врачу-терапевту. Чаще всего требуется общий (клинический) анализ. В этом случае сдают кровь из пальца. Алгоритм и правила сдачи хорошо знакомы всем без исключения с самого детства. Все знают, что анализ нужно сдавать утром, обязательно натощак. Процедура очень простая, а результат обычно готов на следующий день.

Зачем берут капиллярную кровь?

Забор крови из пальца производят в следующих случаях:

при общем анализе для определения клеточного состава;
для определения уровня глюкозы (в этом случае кровь берут и из вены, при этом уровень сахара будет несколько отличаться, что нормально);
экспресс-анализ для определения уровня общего холестерина (для более детального исследования требуется венозная кровь).

Правила подготовки

Общий анализ

Он может быть сокращенным и развернутым. Первый вариант включает такие показатели, как уровень гемоглобина и всех клеток крови (эритроцитов, тромбоцитов, лейкоцитов), а также СОЭ (скорость оседания эритроцитов).

Забор капиллярной крови у ребенка

При развернутом анализе добавляются и другие показатели, среди которых:

гематокрит;
ширина распределения красных клеток;
средний объем эритроцита;
среднее содержание в красной клетке гемоглобина;
лейкоцитарная формула и другие.

Инструменты

Многих людей беспокоит собственная безопасность во время проведения анализа, поэтому у них может возникнуть вопрос о том, чем прокалывают и чем берут кровь. Сегодня практически все медицинские учреждения перешли на использование одноразовых инструментов для прокалывания пальца. Этот инструмент называется скарификатором. Его должны вынуть из невскрытой упаковки на глазах у больного. Следует сказать, что такой прокол делать достаточно больно, поэтому процедура очень не нравится детям.

Сегодня сдача крови может быть безболезненной. Все чаще используют новый прибор, когда берут кровь. Это автоматический ланцет в пластмассовом корпусе. Игла быстро пробивает кожу, поэтому боль не чувствуется. Новые ланцеты имеют много преимуществ:

стерильная игла или лезвие находится внутри корпуса, что обеспечивает безопасность пациентов и медицинского персонала;
надежность пускового механизма исключает случайный выход иглы или лезвия;
исключено повторное использование, благодаря автоматическому возврату иглы или лезвия;
форма иглы обеспечивает снижение болевого эффекта;
прокол целенаправленный, его глубина контролируется;
удобная форма корпуса.

Алгоритм забора

Для работы лаборант должен приготовить:

стерильный скарификатор;
вату;
спирт;
настойку йода;
эфир.

Одноразовый скарификатор – инструмент для прокола пальца

Алгоритм и техника взятия следующие:

Пациент сидит напротив лаборанта. Рука (обычно левая) лежит на столе.
Место прокола дезинфицируется спиртом и обезжиривается эфиром.
Одноразовым скарификатором быстро делают прокол в подушечке безымянного пальца, погружая инструмент на всю глубину режущей части (примерно на 2-3 мм).
Первая капля крови снимается с помощью сухой ваты.
Для исследования используют вторую и следующие капли крови, которые набирают с помощью стеклянного переходника, затем помещают в пробирки и подписывают.
После того, как кровь взяли, место укола обрабатывают спиртом или йодом и зажимают ватным тампоном до полной остановки крови.

Алгоритм забора капиллярной крови у ребенка точно такой же, как и у взрослого.

Почему из безымянного пальца?

Возможно, кого-то интересует, из какого пальца берут кровь и почему. Забор происходит из безымянного пальца, хотя допускается из среднего или указательного. Прокол, как и любое нарушение целостности кожных покровов, может привести к заражению. Безымянный, указательный и средний пальцы имеют изолированную внутреннюю оболочку, поэтому в случае проникновения инфекция сначала будет локализована, а значит, есть время ее ликвидировать. Большой и мизинец напрямую соединяются с оболочкой кисти, и при заражении инфекция распространяется на всю кисть. Выбор безымянного пальца объясняется тем, что он несет наименьшую физическую нагрузку.

Что показывает анализ?

Взятие крови из пальца происходит в профилактических целях, для диагностики и контроля лечения. Это базовое обследование, и основные, наиболее необходимые врачам характеристики, которые показывает кровь, следующие:

уровень гемоглобина;
уровень эритроцитов;
СОЭ;
уровень лейкоцитов;
относительное содержание лимфоцитов, моноцитов, нейтрофилов, базофилов, эозинофилов.

Забор крови с помощью автоматического ланцета

С помощью клинического анализа медики могут диагностировать следующие патологические состояния:

лейкозы;
анемии;
нарушения свертываемости;
наличие в организме инфекционного или воспалительного процесса.

Интерпретация результатов

Расшифровка должна проводиться только лечащим врачом. Не стоит пытаться делать это самостоятельно на основе таблиц, в которых указана норма для каждого показателя. Врач оценивает основные параметры не только в отдельности, но и в совокупности.

Уровень гемоглобина . Норма для женщин – 120-140 г/литр, для мужчин – 130-160 г/литр. Если содержание выше нормы, возможно обезвоживание, кишечные инфекции, порок сердца врожденный. Низкий уровень говорит об анемии.
ЦП (цветовой показатель) . Норма – от 0,85 до 1,15 %. Низкие значения свидетельствуют об анемиях, повышенные наблюдаются при дефиците фолиевой кислоты, при раке желудка.
Эритроциты . Норма для мужчин – 4-5 г/л, для женщин – 3,7-4,7 г/л. Повышение уровня свидетельствует о почечных патологиях, опухолях, синдроме Кушинга. Незначительное превышение нормы может наблюдаться при диарее, приеме мочегонных средств, ожогах. Низкое содержание говорит об анемии, гипергидратации, потерях крови.
СОЭ . Скорость оседания красных клеток – показатель уровня плазменных белков. В норме у женщин – до 20 мм/час, у мужчин – до 15 мм/час. Высокий уровень характерен для воспалительных процессов, инфекций, аутоиммунных болезней, интоксикации, эндокринных, почечных и печеночных патологий, онкологии. Причины понижения – недостаточность кровообращения, гипербилирубинемия, эритремия.
Лейкоциты . Норма белых клеток – 4-9Х10⁹/литр. Причины снижения – рак с вторичными опухолями в головном мозге, диффузные болезни соединительной ткани, брюшной тиф, гепатит вирусный, лейкозы. Повышенный уровень наблюдается при бактериальных и грибковых поражениях, острых воспалениях, гнойных инфекциях, при пневмонии, отитах, панкреатите, бронхите, менингите и так далее.
Тромбоциты . Нормальное содержание кровяных пластинок, отвечающих за свертывание крови, составляет 180-320Х10⁹/литр. Высокие тромбоциты свидетельствуют о развитии ревматоидного артрита, полицитемии, туберкулеза, миелолейкоза. Пониженное содержание сопровождает тромбоцитопеническую пурпуру, апластическую и гемолитическую анемию, гемолитическую болезнь, красную волчанку.

Какую кровь лучше сдавать на анализ – венозную или капиллярную?

Внешне кровь из вены и из пальца немного разная. Венозная – более темная кровь, капиллярная – светлая кровь. Пациенты нередко интересуются, зачем берут венозную, если из пальца взять проще и удобнее. Считается, что с венозной работают лучшие лаборатории мира, а ее исследование с помощью новых методов дает более точные результаты.

В заключение

Анализ крови из пальца – достаточно информативный метод, хотя он отражает лишь общее состояние организма. Отклонения от нормы тех или иных показателей не могут считаться подтверждением наличия каких-либо заболеваний. Изменения в составе крови позволяют заподозрить развивающуюся патологию и пройти специфическое обследование на ранней стадии, когда симптоматика отсутствует. Результат может быть искажен, если не соблюдать правила и сдавать кровь не натощак, а после приема пищи. В этом случае назначают повторный анализ.

Читайте также: